Les maladies neurologiques chez les chevaux présentent souvent un défi diagnostique, car les signes cliniques peuvent être vagues ou non spécifiques. Un outil précieux que les vétérinaires utilisent pour diagnostiquer les cas neurologiques est l’analyse du liquide céphalorachidien (LCR), également appelée « ponction lombaire ».

En évaluant directement l’environnement biochimique et cytologique du système nerveux central (SNC), l’analyse du LCR offre un aperçu des processus pathologiques qui ne peuvent pas être obtenus uniquement par des analyses sanguines de routine ou de l’imagerie.

Les échantillons de LCR sont généralement prélevés à partir des espaces lombo-sacré ou atlanto-occipital, deux réservoirs de liquide céphalorachidien relativement faciles d’accès. Le choix du site dépend de l’état clinique du cheval, de l’expérience du praticien et des ressources disponibles.

Une fois obtenu, le LCR est évalué pour sa clarté, sa couleur, sa concentration en protéines et son contenu cellulaire. Ces informations fournissent des indices importants sur la nature du trouble neurologique. L’analyse du LCR est idéalement intégrée à un examen neurologique, à une imagerie avancée lorsque disponible, et à des tests sérologiques ou moléculaires ciblés afin d’établir un diagnostic définitif.

L’article suivant aborde les questions courantes liées à l’analyse du LCR chez les chevaux, notamment les indications pour le test, les techniques de prélèvement, l’interprétation des résultats et le rôle du LCR dans le bilan diagnostique global des maladies neurologiques équines.

Analyse du liquide céphalorachidien chez les chevaux

Le liquide céphalorachidien (LCR) est le liquide clair qui entoure le cerveau et la moelle épinière du cheval. Il assure un amortissement et une protection physique des tissus nerveux délicats en cas de traumatisme. [1]

Le LCR aide également à transporter des molécules de signalisation, des nutriments et d’autres substances essentielles qui soutiennent le fonctionnement normal du système nerveux. [1]

Les maladies affectant le cerveau ou la moelle épinière peuvent entraîner des modifications de la composition du LCR, que les vétérinaires peuvent évaluer grâce à l’analyse du liquide. [1]

Les vétérinaires peuvent prélever du LCR dans le cadre du processus diagnostique des maladies neurologiques lors d’une procédure communément appelée ponction lombaire. Les résultats peuvent fournir des indices importants sur la condition sous-jacente lorsqu’ils sont interprétés en parallèle avec d’autres tests diagnostiques tels que l’imagerie, les analyses sanguines et d’autres analyses de laboratoire. [2]
Les signes de maladie neurologique chez les chevaux pouvant justifier une analyse du liquide céphalorachidien comprennent : [1]

  • Ataxie (mouvements non coordonnés)
  • Faiblesse
  • Effondrement
  • Changements de comportement
  • Convulsions
  • Cécité
  • Paralysie des membres ou de la queue
  • Léthargie sévère
  • Fièvre d’origine inconnue

Équipement

Le prélèvement de LCR, communément appelé « ponction lombaire », nécessite du matériel stérile afin de prévenir l’introduction de bactéries ou de matières étrangères dans l’espace sous-arachnoïdien, où se trouve le LCR.

L’équipement couramment utilisé pour une ponction de LCR chez le cheval comprend : [3]

  • Aiguilles spinales pouvant mesurer jusqu’à 20 cm (8 po) de long
  • Gants stériles
  • Anesthésique local pour engourdir le site d’insertion de l’aiguille
  • Seringue pour recueillir le liquide

Selon le site de prélèvement du LCR et la préférence du praticien, le cheval est placé sous anesthésie générale ou sous sédation en station debout.

En cas d’anesthésie générale, un espace vaste et dégagé avec un sol antidérapant est nécessaire pour coucher le cheval et assurer un réveil sécuritaire. Pour la sédation en station debout, un jeu de barres de contention ou une autre méthode de contention du cheval est requis. [3]

Procédure

Les vétérinaires prélèvent généralement le LCR soit au niveau de l’articulation atlanto-occipitale du cheval, soit dans l’espace lombo-sacré. La procédure diffère selon le site.

Articulation atlanto-occipitale

Un diagramme anatomique de lespace atlanto axial dun cheval

L’articulation atlanto-occipitale (AO) est l’articulation entre le crâne et la première vertèbre cervicale (du cou). [1] La plupart des vétérinaires effectuent la collecte de LCR AO sous anesthésie générale. [1]

Après avoir anesthésié le cheval, l’équipe vétérinaire tont la nuque du cheval et effectue une préparation chirurgicale pour éliminer les bactéries et autres contaminants étrangers de la peau. [1] Ils fléchissent la tête du cheval vers l’intérieur afin d’ouvrir au maximum l’articulation atlanto-occipitale, puis le vétérinaire insère une longue aiguille dans l’espace articulaire. [1]

Certains vétérinaires peuvent utiliser l’échographie pour aider à guider l’aiguille dans l’espace articulaire. Une fois que l’aiguille entre dans l’articulation, le LCR devrait s’écouler de l’aiguille. [1] L’équipe utilise une seringue pour recueillir le liquide à analyser.

Une fois l’échantillon prélevé, l’équipe vétérinaire permet soigneusement au cheval de se réveiller de l’anesthésie générale. La période de récupération présente un risque élevé que les chevaux se blessent ou blessent leurs manipulateurs lorsqu’ils tentent de se lever sur des membres instables, surtout si leur état est compliqué par des déficits neurologiques. [1]

Espace lombo-sacré

Un diagramme anatomique de lespace lombo sacré dun cheval

L’espace lombo-sacré est une zone entre la dernière vertèbre lombaire (bas du dos) et le sacrum, un ensemble de vertèbres fusionnées dans le bas du dos. [1] La collecte de LCR à cet emplacement peut être réalisée sous sédation debout. [1]

Après avoir sédaté le cheval, l’équipe vétérinaire prépare le site d’injection de l’aiguille en tondant et en nettoyant soigneusement la zone. Comme le cheval est seulement sédaté, ils injectent généralement un anesthésique local sous la peau dans la zone du site d’injection afin de minimiser la réaction du cheval au processus de collecte. [1]

Une fois le site prêt, le vétérinaire introduit une grande aiguille spinale dans la zone. Ils peuvent utiliser un guidage échographique dans certains cas. Les chevaux peuvent réagir fortement à l’entrée de l’aiguille dans l’espace articulaire en fouettant la queue, en tapant des pieds ou en donnant des coups de pied. [1]
Avec l’aiguille dans l’espace lombo-sacré, le vétérinaire utilise une seringue pour prélever du LCR en vue d’une analyse ultérieure. [1]

Interprétation des résultats

Après la collecte du liquide, les vétérinaires examinent plusieurs aspects de la composition du liquide afin d’établir un diagnostic.

Les caractéristiques évaluées comprennent : [2]

  • Apparence
  • Concentration en protéines
  • Comptage cellulaire
  • Composition biochimique
  • Dépistage des maladies infectieuses

L’interprétation des résultats de l’analyse du LCR peut être difficile, car l’analyse donne fréquemment des résultats faussement négatifs.

Les raisons pour lesquelles un test du LCR peut donner un résultat négatif en présence d’une maladie neurologique comprennent : [1]

  • Moment du prélèvement par rapport à la progression de la maladie
  • Échantillon prélevé à un endroit éloigné du site d’origine de la maladie
  • Le processus pathologique ne produit pas de changements significatifs dans la composition du LCR

Pour ces raisons, l’analyse du LCR est mieux adaptée à la détection des maladies inflammatoires pouvant entraîner la mort des tissus dans le cerveau ou la moelle épinière. Ces maladies sont les plus susceptibles de provoquer un changement étendu de la composition du LCR détectable à l’analyse.

L’identification d’une maladie inflammatoire peut aider les vétérinaires à restreindre leur liste de maladies potentielles afin d’établir un diagnostic. [1]

Apparence

Le LCR sain est clair et incolore. [2] Les échantillons présentant une teneur élevée en protéines ou en cellules peuvent devenir troubles, indiquant une anomalie. Un changement de couleur vers le jaune peut indiquer un saignement antérieur dans l’espace sous-arachnoïdien. [2]

Les causes de la xanthochromie (teinte jaune) comprennent : [2]

Concentration en protéines

Il y a généralement très peu de protéines dans le LCR. Si les niveaux de protéines augmentent, cela peut indiquer des dommages à la barrière hémato-encéphalique, le système de filtration qui empêche les composants sanguins d’entrer dans le LCR. [2]

Ce type de dommage peut survenir en raison de maladies inflammatoires, infectieuses ou traumatiques affectant le système nerveux. [2] Une augmentation des protéines peut également indiquer une dégénérescence des tissus, une activation du système immunitaire ou une obstruction de la circulation du LCR dans certains cas. [2]

Numération cellulaire

La numération cellulaire consiste à compter le nombre de différents types de cellules dans l’échantillon de liquide à l’aide d’un microscope. [2]

Trois valeurs différentes sont rapportées lors d’une numération cellulaire : [2]

  • Numération cellulaire totale : Nombre total de cellules présentes dans l’échantillon
  • Numération des globules rouges : Nombre total de globules rouges
  • Numération différentielle : Nombre de types individuels de cellules, comme certains globules blancs tels que les lymphocytes et les neutrophiles

Le LCR équin normal présente une faible numération cellulaire. Si la numération cellulaire totale augmente, cela indique la présence d’une maladie inflammatoire, infectieuse ou traumatique. À partir de là, la numération différentielle peut aider à préciser la liste des causes potentielles en identifiant quelles cellules sont augmentées. [2]

Les monocytes sont une population cellulaire présente en faible nombre dans un LCR sain. Ils sont responsables de la surveillance immunitaire du liquide et détectent rapidement tout contaminant étranger. [3] Une augmentation du nombre de monocytes peut survenir en cas de perturbation du LCR, notamment lors de blessures traumatiques, d’infections ou d’inflammation. [3]

Après une blessure traumatique, les diagnosticiens peuvent observer une érythrophagie chez les monocytes. Il s’agit du processus par lequel les monocytes consomment les globules rouges dans le cadre du nettoyage après un saignement dans l’espace sous-arachnoïdien.

Les neutrophiles dans le LCR indiquent généralement la présence d’une infection active. Ces cellules immunitaires ciblent principalement les bactéries et les champignons, mais leur nombre peut également augmenter lors d’infections virales.

Les causes de la neutrophilie du LCR (augmentation des neutrophiles) chez les chevaux incluent : [2]

Les lymphocytes produisent des anticorps qui ciblent des agents pathogènes spécifiques. [2]
Des taux élevés de lymphocytes sont le plus souvent associés à des infections, telles que : [2][4]

Une grande population de lymphocytes ayant une apparence anormale peut également indiquer un lymphome ou une leucémie. Des lymphocytes élevés peuvent aussi être un signe de polynévrite équine. [4]

Les éosinophiles sont des cellules immunitaires qui ciblent les infections parasitaires ou fongiques. Ces types d’infections du système nerveux sont rares chez les chevaux, donc les éosinophiles ne sont pas attendus dans les comptages cellulaires du LCR. [4]

Composition biochimique

Les concentrations d’enzymes, d’électrolytes, le pH et d’autres composés biochimiques peuvent être évalués dans le liquide céphalorachidien. Par exemple, une diminution du glucose (sucre) dans le LCR est un indicateur de méningite. [4]

Ces tests peuvent fournir des informations supplémentaires qui aident à orienter le processus diagnostique.

Dépistage des maladies infectieuses

Les vétérinaires peuvent soumettre le LCR à des tests de maladies infectieuses. Ces tests identifient soit l’agent infectieux lui-même, soit les anticorps dirigés contre cet agent. [4]

Les tests de maladies infectieuses couramment effectués sur le LCR comprennent : [4]

  • Culture bactérienne : Les diagnosticiens placent l’échantillon de LCR sur un milieu de culture bactérien et observent si des colonies bactériennes se forment. Ils peuvent ensuite identifier l’espèce de bactérie.
  • Sérologie : Le laboratoire introduit l’agent infectieux dans l’échantillon, puis détermine si des anticorps contre l’organisme sont présents. La présence d’anticorps indique une exposition antérieure à l’organisme. Cela n’indique pas nécessairement une infection active chez le cheval.
  • Sérologie de capture IgM : Ce test recherche spécifiquement les IgM, des anticorps produits au début d’une infection. Les IgM ne devraient pas être présentes dans l’espace sous-arachnoïdien. Si elles sont détectées, cela indique une infection active chez le cheval.
  • PCR : Ce test recherche des fragments du matériel génétique d’un organisme infectieux. Des tests PCR sont disponibles pour l’herpèsvirus équin, la myéloencéphalite protozoaire équine et la maladie de Lyme.

Soins après la collecte de LCR chez les chevaux

À la suite de la procédure de prélèvement de LCR, votre vétérinaire peut avoir des instructions spécifiques de soins après intervention à suivre.

Le site d’insertion de l’aiguille doit être maintenu propre et sec afin de réduire le risque d’infection. De plus, des analgésiques peuvent être recommandés pour votre cheval afin d’aider à soulager l’inconfort et à réduire l’enflure.

Les chevaux subissant un prélèvement atlanto-occipital peuvent nécessiter du repos au box et une alimentation surélevée afin d’éviter qu’ils abaissent trop fréquemment la tête. Le pâturage ou le fait de se tenir avec la tête abaissée semble augmenter la douleur au cou après la procédure. [1]

Complications

Les taux de complications après un prélèvement de LCR n’ont pas été largement étudiés, mais sont considérés comme rares. [1][3] Les complications les plus courantes sont la douleur et l’enflure au site d’entrée de l’aiguille, ainsi que les blessures associées à la récupération après une anesthésie générale. [1] Chez certains chevaux, les signes neurologiques s’aggravent après la procédure, mais reviennent à leur état de base en quelques jours.

Rarement, le prélèvement de LCR peut introduire des matières étrangères dans l’espace sous-arachnoïdien, ce qui peut entraîner des infections bactériennes et une méningite septique. [1]

Pour cette raison, les vétérinaires utilisent une technique aseptique lors du prélèvement de LCR. Cela inclut la préparation chirurgicale du site d’insertion de l’aiguille et l’utilisation d’aiguilles et d’équipements stérilisés pendant la procédure.

Questions Fréquemment Posées

Voici quelques questions fréquemment posées sur l’analyse du liquide céphalo-rachidien (LCR) chez les chevaux :

Résumé

L’analyse du liquide céphalorachidien (LCR) est un outil diagnostique clé pour évaluer les maladies neurologiques chez les chevaux, fournissant des informations qui complètent l’examen clinique et d’autres diagnostics.

  • L’analyse du LCR aide à détecter l’inflammation, l’infection, le traumatisme, l’hémorragie ou la néoplasie au sein du système nerveux central
  • Le prélèvement peut être effectué au site lombo-sacré (sédation debout) ou atlanto-occipital (anesthésie générale)
  • Le LCR équin normal est clair, incolore et présente de faibles concentrations de protéines et de cellules
  • Les tests comprennent l’apparence macroscopique, les niveaux de protéines, la cytologie et des diagnostics avancés comme la PCR ou les titres d’anticorps
  • Les résultats du LCR doivent toujours être interprétés conjointement avec l’examen neurologique, l’imagerie et la sérologie pour un diagnostic précis
Manque-t-il quelque chose dans l’alimentation de votre cheval?

Identifier les manques dans le programme alimentaire de votre cheval pour optimiser son bien-être.

Références

  1. Furr. M. and Reed. S. M., Eds. Equine Neurology. Second edition. John Wiley & Sons Inc, Ames, Iowa. 2015.
  2. Conrado. F. O. and Beatty. S. S. K. Fluid Analysis in the Equine Patient. Veterinary Clinics of North America: Equine Practice. 2021.
  3. Schwarz. B. and Piercy. R. J. Cerebrospinal Fluid Collection and Its Analysis in Equine Neurological Disease. Equine Veterinary Education. 2006.
  4. Sharkey. L. C. et al. Veterinary Cytology. Wiley Blackwell, Hoboken. 2021.